基因编辑技术

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大鼠脂肪的分离

?将手术切取的大鼠脂肪组织尽量剪碎后移至离心管,其余步骤与人脂肪的分离一致。

?经手术切除获得的大鼠皮下脂肪组织消化后原代培养24 h,且肉眼观察会发现培养瓶底部贴附着一层网状薄膜,轻轻摇晃培养瓶可使这层网状薄膜从瓶壁上脱落,镜下观 察发现大部分细胞都附着于这层膜上,通过术获取的人脂肪组织消化后则无此现象。增加胶原酶的量和消化时间也无法避免,取材时的或脂肪间结缔组织未被完全消化,穿过细胞筛进入了培养瓶并沉淀于瓶底部形成的。胶原蛋白酶虽然可以特异性水解胶原蛋白的三维螺旋结构,但不会损伤其他蛋白质。处理方法是37 ℃下用胰蛋白酶 消化5 min。然后利用40 μm的细胞筛过滤后传代。 根据作者的经验,每毫升手术切除的大鼠脂肪可分离基质血管成分细胞约1.81×106个。原代培养2.24×10^7个大鼠基质血管成分细胞,40 h后传代时约剩余 6.2×10^6个细胞,细胞剩余率27%。




磁性细胞标记方式

应用MACS技术进行磁性细胞分选重要的一点是高质量的标记。要尽可能地增强阳性细胞的标记,并减弱背景染色。有两种基本的磁性标记方式:直接标记和间接标记。

1、直接磁性细胞标记(Direct magnetic cell labeling)

(磁珠结合的细胞就是所要分离获得的细胞)直接标记是快速、特异的磁性标记方法。目前有多种分选人、小鼠、大鼠以及非人类灵长类细胞的MACS直标微珠可供选用。

2、间接磁性细胞标记(Indirect magnetic cell labeling )

(磁珠结合不需要的细胞,游离于磁场的细胞为所需细胞)间接磁性细胞标记需要联合使用单ke隆或者多ke隆抗ti和MACS间标微珠。未结合抗ti、生物素化抗ti或者荧光素标记抗ti均可作为一抗标记细胞,再使用抗免yi球蛋白微珠、抗生物素或链霉亲和素微珠、抗荧光素微珠作为二抗磁性标记细胞。几乎针对任何种系任何细胞的任何一种单抗或多抗,细胞生物学实验,均可用于间接标记。间接标记主要在如下情况时选用:当没有直标磁珠时;需要用几种抗ti的混合物同时分选或去除多种类型的细胞;间接标记有放大作用,因此可在磁性分选抗原表达弱的目的细胞时使用;使用自备或者配体的磁珠分选中。( -般而言,云南细胞,阴性分离法的磁珠用量比阳性分离法的大,阳性分离法用行更多。)






二、脂质体转染操作步骤

1、操作步骤 [方法一]:

(1) 细胞培养:取 6 孔培养板 (或用 35 mm 培养皿),向每孔中加入 2 mL 含 1~2×105 个细胞培养液,37℃ CO2 培养至 40%~60% 汇合时 (汇合过分,转染后不利筛选细胞)。

(2) 转染液制备:在聚苯乙稀管中制备以下两液 (为转染每一个孔细胞所用的量)A 液:用不含培养基稀释 1-10 μg DNA,终量 100μL,B 液:用不含培养基稀释 2-50 μgLR,终量 100μL,轻轻混合 A、B 液,细胞增殖实验,室温中置 10-15 分钟,稍后会出现微浊现象,但并不妨碍转染 (如出现沉淀可能因 LR 或 DNA 浓度过高所致,应酌情减量)。

(3) 转染准备:用 2 mL 不含培养液漂洗两次,再加入 1 mL 不含培养液。

(4) 转染:把 A/B 复合物缓缓加入培养液中,基因编辑技术,摇匀,37℃ 温箱置 6~24 小时,吸除无转染液,换入正常培养液继续培养。

(5) 其余处理如观察、筛选、检测等与其它转染法相同。

注意:转染时切勿加,对转染效率有很大影响。



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